No category

منابع پایان نامه ارشد درباره دانشکده بهداشت، دانشگاه تهران، افراد مبتلا

دالتون که شامل کمپلکس آنتي ژني 85 که اين کمپلکس پروتئيني از سه پروتئين مجزا با همولوژي بالا به نامهاي 85C ,85B ,85A تشکيل شده است. فعاليت مايکوليل ترانسفرازي در ساخت ديواره باکتري و در بيوسنتز فاکتور طنابي شدن دارد.
18 کيلو دالتون که شامل پروتپينهاي MPT63 و MPT70 ترشحي ميباشند.
همچنين محدودههاي وزني آنتيژنهاي ترشحي در مايکوباکتريوم بوويس 18 کيلو دالتون که شامل پروتپين MPB70 که مختص اين سويه ميباشد و 23 کيلو دالتون که شامل پروتپين MPB83 متشابه آنتيژن MPB70 ميباشد (Mycobacteria., 1999).
در باندهاي حاصل از تفکيک هر دو نوع پروتئينهاي سويههاي مايکوباکتريوم بوويس و مايکوباکتريوم توبرکلوزيس حساس و مقايسه آن با سويه M. tuberculosis H37Rv نيز شباهتهايي مشاهده ميشود که با گسترش و شناسايي دقيقتر و جامعتر اين شباهتها ميتوان به الگوهايي براي ايمونيزاسيون رسيد. به عنوان مثال دو محدوده وزني 45 و 60 کيلودالتوني کانديدهاي مناسبي در اين زمينه محسوب ميشوند (Ramses A Gamboa-Suasnavart. et al., 2011).
به نظر ميرسد اختلاف بيان باندهاي پروتئيني سويههاي حساس و بوويس شايد در صورت تخليص جامعتر و دقيقتر پروتئيني و با به کارگيري روشهاي مناسب به عنوان پروتئين مارکر و يا حتي بيومارکر موثر در تشخيص سويههاي توبرکلوزيس حساس و بوويس از يکديگر قابل استفاده باشد، چرا که افتراق بين سويههاي بوويس و توبرکلوزيس حساس در مواردي که تشخيص بين اين سويهها کاملا مشخص نباشد نيز مهم است. درمان افراد مبتلا به بوويس معمولا مشابه درمان مبتلايان به مايکوباکتريوم توبرکلوزيس حساس است و از اينرو تفاوت پروفايل پروتئيني در بين اين دو گونه منجر به تشخيص زودرس و تفکيک اين دو گونه از هم و نهايتا کاهش هزينههاي درماني را در بر خواهد داشت.
نظر به آنکه متدهاي تشخيصي مايکوباکتريوم توبرکلوزيس اعم از مايکوباکتريوم حساس و مقاوم به دارو و حتي مايکوباکتريوم بوويس مبتني بر روشهاي ميکروبيولوژيک همچون اسمير مستقيم، کشت و يا PCR ميباشد، ليکن کشت، همواره روش gold standard محسوب ميشود ولي حساسيت پائين برخي از اين روشها مثل لام مستقيم و يا طولاني بودن زمان جوابدهي به بيماران مشکوک به سل مانند کشت در محيط اختصاصي مايکوباکتريوم، لزوم درمان سريع و تشخيص آسان را اجتنابناپذير مينمايد. انتخاب پروتئينهاي اختصاصي که تفاوت در سويههاي حساس و بوويس و يا حتي مقاوم را نشان دهد ميتواند منجر به تعيين اين پروتئينها به عنوان بيومارکر تشخيصي مناسب براي تشخيص زود هنگام باشد. از اين منظر مشاهده اختلاف باندهاي پروتئين در بررسي حاضر ميتواند شروعي در انتخاب پروفايل مورد اختلاف و مورد نظر براي تعيين پروتئين کانديد مناسب تشخيصي باشد.
پيشنهادات:
بنابراين پيشنهاد ميشود که براي اختلاف پروتئين در محدودههاي وزني مولکولي مشاهده شده در بررسي حاضر با انجام مطالعات تکميلي از جمله الکتروفورز دو بعدي و mass spectrometry منجر به خالصسازي موثرتر اين پروتئينها در آينده گردد و چه بسا که اين تفاوت پروتئيني جهت تعيين دقيق ايزوتوپهاي موثر در واکنشهاي پاسخ ايمني ميزبان نيز مفيد خواهند بود.
منابع
1. اداره کنترل سل و جذام، مرکز مديريت بيماريهاي واگير، وزارت بهداشت درمان و آموزش پزشکي. (1390). www.cdc.hbi.ir/TB-situation-in -Iran-aspx
2. بهره مند ا.ر.، روشهاي آزمايشگاهي جهت جداسازي و تعيين هويت مايکوباکتريومها، انتشارات معاونت پژوهشي وزارت بهداشت و درمان و آموزش پزشکي، 1372.
3. مصوبه اداره کل امور دارو و مواد مخدر (1379) به شماره 20017/72/5/د.
4. عليخاني م.ي. (1375) تشخيص سريع مجموعه مايکوباکتريوم توبرکلوزيس-بوويس در مايعات استريل بدن با روش Nested-PCR و مقايسه نتايج آن با کشت و لام مستقيم. پايان نامه کارشناسي ارشد باکتري شناسي دانشکده بهداشت دانشگاه تهران
5. Agger E.M. and Andersen P. (2001) Tuberculosis subunit vaccine development: on the role of interferon-gamma. Vaccine. 19:2298-2302.
6. Alcaide F., Pfyffer G.E. and Telenti A. (1997) Role of embB in natural and acquired resistance to ethambutol in mycobacteria. Antimicrobial Agents and chemotherapy. 41:2273-2270.
7. Almeida Da Silva P.E and. Juan Palomino C. (2011) Molecular basis and mechanisms of drug resistance in Mycobacterium tuberculosis: classical and new drugs. J Antimicrob Chemother. 66: 1417-1430.
8. Amdekar Y. (2005) Tuberculosis- persistent threat to human health. Indian J. Pediatr. 72: 333-338.
9. Anderson L. (2005) Candidate-based proteomics in the search for biomarkers of cardiovasculardisease. J Physiol. 15;563(Pt 1):23-60.
10. Bahrmand A.R, Malkov I.G., Samar G. and Saifi M. (1994) Differentiation of M.tuberculosis-bovis complex from atypical Mycobacteria by polymerase chain reaction. Iranian Journal of Medical Science. 19:3- 4.
11. Baily G.V (1980). Tuberculosis prevention trial. Madras. Indian Journal Research. 72 :1-74.
12. Barker L.F., Brennan M.J., Rosenstein P.K. and Sadoff J.C. (2009) Tuberculosis vaccine research: the impact of immunology. Curr Opin Immunol. 21(3):331-8.
13. Barouni A.S., Augusto C.J., Lopes M.T.. Zanini M.S. and Salas C.E. (2004) A pnca polymorphism to differentiate between Mycobacterium bovis and Mycobacterium tuberculosis. Molecular and Cellular Probes. 18(3):167-170.
14. Barrera L. (2007) The Basics of Clinical Bacteriology. In: Palomino J.C., Le?o S.C., and Ritacco V., Eds., Tuberculosis 2007: from basic science to patient care, Sao Paulo, 93-112.
15. Behr M.A. and Small P.M. (1999) A historical and molecular phylogeny of BCG strains. Vaccine. 17:915-922.
16. Beranova-Giorgianni S. (2003) Proteome analysis by two-dimensional gel electrophoresis andmass spectrometry: strengths and limitation. Trend in analytical chemistry. 22:273-81.
17. Berredo-Pinho M., Kalume D.E., Correa P.R., Gomes L.H., Pereira M.P., Silva R.F., Castello-Branco L.R., Degrave W.M. and Mendoca-Lima L. (2011) proteomic profile of culture filtrate from the Brazilian vaccine strain Mycobacterium bovis BCG Moreau compared M.bovis BCG Pasteur. BMC Microbiology. 11:80.
18. Boer A.S., Borgdorff M.W., Haas P.E., Nagelkerke N.J., Embden J.D. and van Soolingen D. (1999) Analysis of rate of change of IS6110 RFLP patterns of Mycobacterium tuberculosis based on serial patient isolates. Infectious Diseases. 180(4):1238-1244.
19. Braibant M., lefever P., de wit L. and Piers P. (1996) A mycobacterium tuberculosis gen cluster in coding protein of the phosphate transporter homologous to the E.coli Pst system. gene. 176:171-176.
20. Braon E.J. and Sydney M.F. (1990) Diagnosic Microbiology; 8th edition, 597-640.
21. Britton W.J., Hellqvist L., Ivanyi J. and Basten A. (1987) Immunopuri(r)cation of 21. radiolabelled antigens of Mycobacterium leprae and Mycobacterium bovis (bacillus Calmette- Guerin) with monoclonal antibodies. Scand J Immunol 26:149-159.
22. Bull T.J. and Shanson D.C. (1992) Rapid misdiagnosis by Mycobacerium avium intracellulare masquerading as tuberberculosis PCR/DNAprobe tests. The Lancet. 340(8831):1360.
23. Campbell E.A, Korzheva N., Mustaev A., Murakami K., Nair S., Goldfard A. and Darst A.S. (2001) Structural mechanism for rifampycin inhibition of bacterial RNA polymerase. Cell. 104(6):901-912.
24. Carrera G.F., Young S. and Leviki A.M. (1976) Intestinal tuberculosis. Gastero intestinal radiology. 1:147-155.
25. Chiristenes W.L. (1974) Genitourinary tuberculosis; review of 102 cases. Medicine. 53:377-390.
26. Colditz G.A., Brewer T.F., Berkey C.S., Wilson M.E., Burdick E., Fineberg H.V. and Mosteller F. (1994) Efficacy of BCG vaccine in the prevention of tuberculosis. Meta-analysis of the published literature. JAMA. 271:698-702.
27. Collins C.H., Grange J.N. and. Yates M.D. (1997) Tuberculosis Bacteriology. 2 nd edn. Oxford: Butter word- Heinemann. 110-117.
28. Comacho L.R., Enserguix D.E. Gicquel B. and Guilhot C. (1999) Identification of a virulence gene cluster of Mycobacterium tuberculosis by signature-tagged transposon mutagenesis. Molecular Microbiology. 34:257-267.
29. Content J., Baribant M., Connel N. and Ainsa J.A. (2005) Transport processes, in tuberculosis and the tubercle bacillus. ASM Press. 379-401.
30. Cousins D.V., Skuce R.A., Kaswala R.R. and van Embden J.D.A. (1998) Towards a standardized approach to DNA fingerprinting of Mycobacterium bovis. International Journal of Tuberculosis and Lung Deseases. 2:471-478.
31. David H.L., Ratogi N., Clavel-Seres S., Clement F. and Thorel M.F. (1987) Structure of the cell envelope of Mycobacterium avium. Zentralbl. Hyg. 264:49-66.
32. Delogu, G. and Brennan M.J. (2001) Comparative immune response to PE and PE_PGRS antigens of Mycobacterium tuberculosis. Infect. Immun. 69: 5606-5611.
33. Dennison C. (2002) A guide to protein isolation. Kluwer Academic Publisher. www.Kluwer online.com
34. Dheenadhayalan V., Shin K.S., Chang C.F., Chang C.D., Wang S.J., McDonough S., McDonough P., Stehman S., Shin S., Torres A. and Chang Y.F. (2002) Cloning and characterization of the genes coding for antigen 85A, 85B and 85C of Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis. DNA Seq.13(5):287-94.
35. Dorman S.E. (2004) Susceptibility to tuberculosis: clues from studies with inbred and outbred New Zealand White rabbits. Infection and Immunity. 72:1705-1700.
36. Dufault P. (1941) Tuberculosis infection among nurses and medical students in sanatoriums and general hadpitals. N.Engl. J.Med. 224:711-715.
37. Farnia P., Mohammadi F., Mirsaedi M., Zia Zarifi A., Tabatabee J., Bahadori M., Akbar Velayati A. and Reza Masjedi M. (2004) Bacteriological follow-up of pulmonary tuberculosis treatment: a study with a simple colorimetric assay. Microbes Infect 6, 972- 976.
38. Farshadzadeh Z., Sankian M., Yousefi F., Gholobi A., Zarif R., Naderi nasab M., Rashed T. and Varasteh (2010) Cloning, expression and purification of early secretory antigenic target 6kDa protein (ESAT-6) of Mycobacterium tuberculosis. Jundishapur Journal of Microbiology. 3(2):53-60.
39. Giannoni F., Iona E., Sementili F., Brunori L., Pardini M., Miqliori G.B., Orefici G. and Fattorini L. (2005) Evaluation of a new line probe assay for rapid

دیدگاهتان را بنویسید

نشانی ایمیل شما منتشر نخواهد شد. بخش‌های موردنیاز علامت‌گذاری شده‌اند *